摘要

研究采用威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀建立干酪乳桿菌高效電轉化體系。通過優化方波脈沖參數（電壓1500V/cm，脈寬3ms），實現pMG36e質粒轉化效率達3.2×10? CFU/μg DNA，較傳統指數波提升45%。結合智能阻抗檢測與預編程參數庫，顯著提高實驗重復性，為乳酸菌基因工程提供標準化技術方案。

引言

干酪乳桿菌作為重要的益生菌載體，其遺傳改造依賴高效的外源DNA導入技術。傳統化學轉化法受限于細胞壁結構障礙（Peptidoglycan層厚度達25-30nm），轉化效率普遍低于102 CFU/μg。本研究基于威尼德Gene Pulser 830的精準方波脈沖技術，突破性解決革蘭氏陽性菌電轉效率低下難題。該設備的極性反轉功能可有效中和細胞膜表面電荷（Zeta電位-35mV），配合動態阻抗匹配技術，成功將電轉效率提升至工業應用閾值（＞10? CFU/μg）。

1. 材料與方法

儀器配置

威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀配備：

雙極性脈沖模塊（電壓范圍50-3000V）

微生物專用0.2cm電轉杯（某品牌無菌耗材）

智能溫控系統（4℃預冷模式）

2. 實驗菌株與質粒

干酪乳桿菌LC2W（CGMCC 1.5956）

pMG36e穿梭質粒（攜帶紅霉素抗性標記）

采用某品牌高純度質粒提取試劑盒

3. 電轉化流程優化

3.1 感受態制備

菌體經含1%甘氨酸的MRS培養基37℃培養至OD600=0.6，0.5mol/L蔗糖洗滌三次，終濃度調整為101? CFU/mL。

3.2 電轉參數設定

調用設備預置乳酸菌參數組（代碼LAC-BASIC），設置：

脈沖電壓：1500V/cm（對應儀器顯示值300V）

脈沖寬度：2.8-3.2ms梯度優化

脈沖次數：單次脈沖

阻抗匹配：啟動Auto-Z自動補償功能

3.3 電轉后處理

立即加入1mL含0.3mol/L蔗糖的復蘇培養基，37℃靜置2h后涂布含5μg/mL紅霉素的篩選平板。

4. 技術實現路徑

1. 動態阻抗匹配

設備在預脈沖階段（0.1ms）檢測樣品電導率（典型值0.8-1.2mS/cm），自動調整輸出電壓補償介質電阻差異。經測試可使批次間轉化效率變異系數由傳統方法的32%降至7.8%。

2. 極性反轉技術

在3ms主脈沖周期內實現兩次極性切換（+1500V→-500V→+800V），有效克服細胞壁極化效應。透射電鏡顯示處理組細胞壁孔道直徑達18.6±2.3nm（對照組僅9.4±1.5nm）。

3. 安全護機制

電弧監測系統以10μs采樣間隔監控電流突變，當檢測到電流波動＞15%時在0.5ms內切斷輸出，質粒降解率降低至傳統設備的1/3（HPLC檢測值＜5%）。

結果與討論

1. 參數優化結果

在2mm電轉杯體系中，1500V/cm、3ms組合獲得最高轉化效率。效率-存活率平衡點出現在脈沖寬度3.2ms時，存活率42.3%對應效率3.1×10? CFU/μg。

2. 與傳統方法對比

相較于BTX ECM630系統，本方案：

轉化效率提升45%（p<0.01，t檢驗）

操作時間縮短60%（含參數優化環節）

耗材成本降低30%（無需專用電轉液）

3. 應用驗證

成功實現8-15kb外源片段（包括乳酸脫氫酶基因簇）的高效轉化，陽性克隆篩選周期由常規7天縮短至3天。

技術經濟性分析

以年產1000株工程菌的實驗室為例：

傳統方案：耗材成本￥18,600/年，設備維護￥7,200/年

本方案：耗材成本￥12,900/年（兼容常規電轉杯），三年免費維保

投資回收期＜14個月（按提升45%科研產出計算）

結論

研究證實威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀在革蘭氏陽性菌轉化領域具有顯著優勢：其動態阻抗匹配技術可將操作容錯率提升3倍，預編程參數庫減少80%方法開發時間。配合某品牌專用電轉試劑，整套方案使干酪乳桿菌電轉效率穩定達到工業應用標準，為功能基因組研究和代謝工程提供可靠技術平臺。

參考文獻

1. 張和平,張七斤,任貴強,等.乳酸桿菌對攻毒小鼠的保護作用和對腸道菌群的影響[J].微生物學通報.2007,(3).DOI:10.3969/j.issn.0253-2654.2007.03.012 .

2. 陳霞,孫志宏,張文弈,等.酸脅迫對干酪乳桿菌H+-ATP酶基因表達的影響[J].微生物學通報.2007,(3).DOI:10.3969/j.issn.0253-2654.2007.03.020 .

3. 張和平,張七斤,孟和畢力格,等.L.casei Zhang對小鼠T淋巴細胞亞群及血清IgG和腸黏膜SIgA的影響[J].中國乳品工業.2006,(10).DOI:10.3969/j.issn.1001-2230.2006.10.001 .

4. 烏日娜,張和平,孟和畢力格.酸馬奶中乳桿菌Lb.casei.Zhang和ZL12-1的16S rDNA基因序列及聚類分析[J].中國乳品工業.2005,(6).DOI:10.3969/j.issn.1001-2230.2005.06.001 .

5. Liu CQ,Su P,Khunajakr N,等.Development of food-grade cloning and expression vectors for Lactococcus lactis[J].Journal of applied microbiology.2005,98(1).127-135.

6. C, Platteeuw,I, van Alen-Boerrigter,S, van Schalkwijk,等.Food-grade cloning and expression system for Lactococcus lactis.[J].Applied and environmental microbiology.1996,62(3).1008-13.

7. E, Delorme.Transformation of Saccharomyces cerevisiae by electroporation.[J].Applied and environmental microbiology.1989,55(9).2242-6.

8. S, David,G, Simons,W M, De Vos.Plasmid transformation by electroporation of Leuconostoc paramesenteroides and its use in molecular cloning.[J].Applied and environmental microbiology.1989,55(6).1483-9.