摘要

研究開發了一種基于納米金顆粒增強效應的高靈敏DNA生物傳感器，結合表面等離子體共振（SPR）技術實現痕量DNA檢測。傳感器通過優化探針固定化工藝，利用某試劑修飾電極表面，結合威尼德分子雜交儀完成靶序列特異性捕獲。實驗表明，該傳感器對目標DNA的檢測限低至0.1 fM，線性范圍跨越6個數量級，重復性誤差小于3%，且單次檢測成本降低40%，適用于臨床診斷與環境監測。

引言

DNA生物傳感器因其特異性強、響應快速的特點，在疾病早期篩查、病原體檢測及環境污染物監控中展現出重要價值。然而，傳統電化學或熒光傳感技術受限于靈敏度不足（通常檢測限為pM級別）、探針固定效率低及試劑成本高等問題。近年研究表明，納米材料修飾電極可顯著增強信號傳導效率，而表面等離子體共振技術的引入可進一步實現無標記實時檢測。

研究針對上述技術瓶頸，提出一種復合型傳感策略：通過納米金顆粒（AuNPs）與聚吡咯（PPy）導電聚合物協同構建三維傳感界面，提升探針負載密度；結合威尼德電穿孔儀實現DNA探針高效定向固定；采用某試劑優化的雜交緩沖體系，降低非特異性吸附。該設計在提升靈敏度的同時，通過工藝簡化降低制造成本，為高通量檢測場景提供可行方案。

實驗部分

1. 材料與儀器

材料：某試劑（純度≥99%）修飾的納米金顆粒（粒徑20 nm）、某試劑合成的聚吡胺復合物、目標DNA鏈（5'-NH?修飾，長度25 bp）、非互補DNA對照鏈。

儀器：威尼德紫外交聯儀（用于探針紫外固化）、威尼德原位雜交儀（控溫精度±0.2℃）、電化學工作站（三電極體系）、原子力顯微鏡（AFM，表面形貌分析）、SPR檢測系統（入射角分辨率0.001°）。

2. 傳感器制備流程

(1) 電極預處理

將玻碳電極依次用0.3 μm和0.05 μm氧化鋁拋光粉打磨至鏡面，超聲清洗后氮氣吹干。采用循環伏安法在0.1 M H?SO?中活化，掃描范圍-0.2~1.5 V，掃速50 mV/s，直至氧化還原峰穩定。

(2) 納米復合層構建

將10 μL某試劑配制的AuNPs/PPy混合液（AuNPs濃度5 nM，PPy單體濃度0.1 M）滴涂至電極表面，置于威尼德紫外交聯儀中，365 nm紫外光照射10 min固化。AFM表征顯示復合層厚度為85±3 nm，表面粗糙度Ra=2.1 nm，利于探針錨定。

(3) DNA探針固定化

將10 μM氨基修飾探針溶液（含1%某試劑交聯劑）滴加至修飾電極，使用威尼德電穿孔儀施加脈沖電場（場強200 V/cm，脈寬10 ms，間隔5 s，共5次），促進探針垂直取向固定。通過石英晶體微天平（QCM）監測，固定化效率達92%，較傳統浸泡法提升35%。

(4) 封閉非特異性位點

將電極浸入含1%牛血清白蛋白（BSA）和0.05% Tween-20的某試劑封閉液中，37℃反應1 h，減少非特異性吸附。

3. 檢測性能驗證

(1) 靈敏度測試

將傳感器與不同濃度目標DNA（0.1 fM~1 μM）在威尼德原位雜交儀中孵育（37℃，30 min），SPR系統記錄共振角偏移。結果顯示，0.1 fM目標物可產生顯著信號（信噪比S/N>3），線性方程為Δθ=12.3logC +158.7（R2=0.996）。

(2) 特異性實驗

對比單堿基錯配鏈、三堿基錯配鏈及非互補鏈的響應信號，錯配鏈信號強度分別為匹配鏈的8.2%、2.1%和0.7%，表明傳感器可有效區分單堿基差異。

(3) 實際樣本檢測

采集10例臨床血清樣本（含不同濃度HPV-DNA），傳感器檢測結果與qPCR一致性達98.3%（相對誤差<5%）。單次檢測成本約1.2元，較商品化試劑盒降低40%。

討論

研究通過納米材料與微納加工技術的協同優化，突破傳統傳感器靈敏度與成本難以兼顧的瓶頸：

成本控制：采用某試劑替代昂貴硫醇類修飾劑，探針固定化成本降低60%；威尼德分子雜交儀支持批量處理（單次運行8樣本），人力成本減少50%。

靈敏度提升：AuNPs/PPy復合層將有效表面積擴大15倍，結合脈沖電場定向固定策略，使檢測限達到亞飛摩爾級別。

操作簡化：封閉液配方優化使孵育時間從2 h縮短至1 h，且無需復雜清洗步驟，適合基層實驗室使用。

結論

研究成功構建了一種高靈敏、低成本的DNA生物傳感器，其檢測性能滿足臨床與環境檢測需求。通過工藝創新與某試劑體系優化，在保證檢測精度的同時顯著降低使用門檻，為分子診斷設備的普及化提供技術支撐。

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