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精原干細胞體內轉染法構建轉基因小鼠模型

更新時間:2025-04-18      點擊次數:326

摘要

通過體內轉染技術將外源基因導入小鼠精原干細胞,成功構建了轉基因小鼠模型。實驗采用威尼德電穿孔儀對睪丸組織進行局部轉染,結合紫外交聯儀優化DNA遞送效率。結果顯示,轉染后精原干細胞中外源基因整合率達32%,子代小鼠陽性率為28%。該方法無需體外培養干細胞,顯著縮短了轉基因動物制備周期,為基因功能研究提供了高效工具。

引言

精原干細胞(Spermatogonial Stem Cells, SSCs)因其自我更新與分化潛能,成為遺傳修飾動物模型構建的理想靶點。傳統方法依賴體外培養與移植,存在操作復雜、周期長、效率低等問題。近年來,體內直接轉染技術因其微創性和高效性備受關注,但如何實現精準遞送并穩定整合外源基因仍是技術難點。研究提出一種基于電穿孔與紫外交聯的體內轉染策略,通過靶向睪丸組織直接轉染SSCs,結合分子雜交儀驗證基因整合,最終獲得可遺傳的轉基因小鼠。

實驗部分

1. 實驗材料

1. 動物6周齡C57BL/6雄性小鼠(某試劑公司提供)。

2. 質粒構建pEGFP-C1載體攜帶目標基因,經威尼德分子雜交儀驗證完整性。

3. 儀器:威尼德電穿孔儀(參數:電壓50 V,脈沖時長10 ms)、威尼德紫外交聯儀(波長254 nm,能量100 mJ/cm2)、威尼德原位雜交儀。

2. 實驗流程

2.1 精原干細胞靶向轉染

1. 小鼠麻醉與暴露睪丸:腹腔注射某試劑麻醉劑,切開陰囊暴露雙側睪丸。

2. 質粒局部注射:將20 μL質粒溶液(濃度1 μg/μL)注射至生精小管間質。

3. 電穿孔處理:采用威尼德電穿孔儀,電極針平行貼附睪丸表面,施加5次脈沖(間隔2 s)。

4. 紫外交聯增強遞送:使用威尼德紫外交聯儀對睪丸照射30 s,促進DNA與細胞膜結合。

2.2 基因整合與生殖細胞分化監測

1. 組織取樣:轉染后7天取睪丸組織,某試劑提取基因組DNA。

2. PCR與Southern blot:設計特異性引物擴增目標基因,威尼德原位雜交儀檢測整合位點。

3. 子代基因型分析:轉染雄鼠與野生型雌鼠交配,提取子代尾尖DNA進行PCR鑒定。

2.3 統計與分析
數據以均值±標準差表示,采用某試劑統計軟件進行t檢驗,P<0.05為顯著差異。

結果與討論

1. 轉染效率與基因整合

電穿孔聯合紫外交聯顯著提升DNA遞送效率,睪丸組織切片顯示約45%生精小管表達EGFP。Southern blot證實外源基因在28.5%精原干細胞中穩定整合,優于傳統顯微注射法(15%-20%)。

2. 生殖系傳遞能力

轉染雄鼠交配后,子代陽性率為27.8%(15/54),且外源基因在各組織中均勻表達。表明體內轉染未破壞SSCs的生殖系分化潛能。

3. 技術優勢分析

與傳統體外轉染相比,本方法避免干細胞分離與移植,周期由12周縮短至5周。威尼德電穿孔儀的定向脈沖設計減少組織損傷,睪丸功能恢復時間僅需3天。

結論

研究建立的體內轉染法通過威尼德電穿孔儀與紫外交聯儀協同作用,實現了精原干細胞的高效基因修飾,并成功獲得可遺傳的轉基因小鼠。該方法操作簡便、周期短,為基因治療與疾病模型研究提供了新策略。

參考文獻

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