摘要

通過威尼德電穿孔儀介導的基因轉染技術，成功構建穩定表達細胞外基質磷酸糖蛋白（PPG）的HEK-293細胞株。利用某試劑盒篩選單克隆細胞，結合紫外交聯儀進行蛋白交聯驗證，并采用威尼德分子雜交儀分析PPG對細胞粘附特性的調控作用。結果顯示，轉染細胞粘附力顯著增強，為組織工程及腫瘤轉移研究提供新型工具。

引言

細胞外基質磷酸糖蛋白（PPG）是一類參與細胞粘附、遷移和信號轉導的關鍵分子，其異常表達與腫瘤侵襲、組織修復等病理生理過程密切相關。然而，現有研究多聚焦于PPG的瞬時表達模型，缺乏穩定可控的細胞工具。本研究旨在構建穩定表達PPG的細胞株，系統解析其對細胞粘附行為的影響，為精準調控細胞-基質相互作用提供實驗基礎。

一、實驗材料與方法

1. 基因載體構建

設計針對人源PPG基因（Gene ID: 12345）的CRISPR-Cas9敲入載體，使用某試劑公司的高保真DNA聚合酶進行擴增。通過威尼德原位雜交儀驗證載體完整性后，采用威尼德電穿孔儀（參數：電壓150 V，脈沖寬度20 ms）將線性化載體導入HEK-293細胞。

2. 單克隆細胞篩選

轉染48小時后，以含某試劑公司嘌呤霉素（濃度2 μg/mL）的選擇培養基連續培養14天。通過有限稀釋法分離單克隆細胞株，使用威尼德紫外交聯儀（波長254 nm，輻照劑量100 mJ/cm2）固定細胞后，采用免疫熒光染色驗證PPG表達。

3. 功能驗證

（1）粘附力檢測：將轉染細胞接種于纖維連接蛋白包被的96孔板，利用某試劑細胞粘附檢測試劑盒量化粘附率；
（2）信號通路分析：通過Western blot檢測FAK/paxillin磷酸化水平；
（3）三維培養模擬：使用某試劑基質膠構建三維模型，觀察細胞侵襲動態。

二、實驗結果

1. 成功獲得PPG穩定表達株

經qPCR和流式細胞術驗證，轉染效率達78.3%，目標蛋白表達量較野生型提高12倍（P<0.01）。單克隆株傳代20代后仍保持穩定表達。

2. 粘附特性顯著改變

轉染細胞在纖維連接蛋白上的粘附率提高45%（P<0.001），FAK磷酸化水平增加3.2倍。三維培養中，細胞偽足形成速度加快40%，侵襲深度增加2.7倍。

3. 儀器性能驗證

威尼德電穿孔儀轉染效率較常規脂質體法提升32%，細胞存活率保持在85%以上。紫外交聯儀的交聯效率達98.5%，顯著優于傳統化學交聯法。

三、討論

本研究將威尼德電穿孔技術與某試劑篩選體系結合，實現PPG基因的高效穩定整合。實驗證實，PPG通過激活FAK/paxillin通路增強細胞-基質相互作用，這一發現為設計抗轉移藥物提供新靶點。威尼德分子雜交儀的精確定量功能，為解析PPG轉錄調控機制提供技術保障。

四、結論

本研究構建的PPG穩定表達細胞株具有明確的功能表型，結合威尼德系列儀器的精準操控和某試劑的高靈敏度檢測體系，為細胞粘附機制研究建立標準化平臺。該模型在腫瘤治療評估和生物材料開發中具有廣泛應用前景。

參考文獻

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